《動物細胞培養(yǎng)》實驗內容(共10頁)

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1、精選優(yōu)質文檔-傾情為你奉上細胞工程實驗技術（動物細胞培養(yǎng)部分）目 錄實驗一 實驗器材的清洗、包裝和消毒一、實驗目的1、 掌握細胞培養(yǎng)常用實驗器材的清洗要領、清洗步驟和注意事項。2、 掌握細胞培養(yǎng)常用器材的包裝要領和要求。3、 掌握正壓濾器的安裝、使用和拆除方法及操作注意事項。二、實驗用品以組為單位包裝物品1、 量筒（100mL、500mL）2、 大、小燒杯3個 3、 1000mL容量瓶×14、 移液管1mL×3(滅菌)5、 （100mL、250mL、500mL）鹽水瓶、（500mL）廣口瓶×各4(滅菌)6、 眼科剪刀、眼科鑷子各2把(滅菌)7、 細胞培養(yǎng)瓶

2、5;3(滅菌)其它：飯盒、青霉素瓶、牛皮紙、離心管、滴管、注射器、磁棒、繩、標簽紙等雜干。三、實驗內容（一） 清洗1、 要領：浸泡、刷洗、酸泡。2、 步驟：洗衣粉浸泡12h刷洗流水震蕩沖洗1520遍漓水蒸餾水洗蕩2次37烘干待包裝。3、 注意事項：(1) 使用后的器材要立即投入水中。(2) 器皿內要充滿液體，不得有氣泡。(3) 器材要用流水震蕩干凈。（二） 包裝1、 大的器材如：量筒、廣口瓶、培養(yǎng)皿、吸管等要包裝。2、 小的器材如：注射器、剪刀、鑷子放入飯盒。3、 注意事項：(1) 包裝時手指與器材接觸面積要小，手指不能觸及器材使用端。(2) 封閉器材使用端，標記器材手持端。(3) 小包裝(4

3、) 玻璃管道口加棉花。（三） 濕熱消毒：高壓滅菌鍋消毒四、作業(yè)1、 清洗的要求為何較高？你認為該如何保證器皿中無雜質？2、 器材包裝有何要求？3、實驗二 常用的儀器設備介紹一、實驗目的了解動物細胞培養(yǎng)中常用儀器設備的使用方法、注意事項和保養(yǎng)方法二、實驗用品1） 超凈工作臺2） 自動雙重純水蒸餾器3） 高壓蒸氣滅菌器4） 過濾器5） 電熱恒溫干燥箱6） 二氧化碳培養(yǎng)箱7） 冰箱8） 倒置顯微鏡三、實驗內容1、 了解超凈工作臺的工作原理2、 自動雙重純水蒸餾器結構、使用注意事項。3、 高壓蒸氣滅菌器的工作原理4、 正壓過濾器的使用方法5、 二氧化碳培養(yǎng)箱的使用方法四、作業(yè)1、敘述超凈工作臺的工作原

4、理2、正壓過濾器為何會除菌實驗三 常用動物細胞培養(yǎng)用液的配制一、實驗目的掌握常用動物細胞培養(yǎng)用液的組成及配制方法。二、實驗用品與儀器量筒、燒杯、廣口瓶、天平、各種無機鹽、三、實驗內容（一）平衡鹽溶液的配制1、平衡鹽溶液的配方如下：NaClKClCaCl2MgSO4·7H2ONa2HPO4·2H2OKH2PO4NaHCO3葡萄糖苯酚紅Hanks8.000.400.140.200.060.060.351.000.02D-Hanks8.000.400.060.060.350.02I組配Hanks（1000mL），V組配D-Hanks（1000mL），其他各組不配平衡鹽溶液。2、配

5、制方法：（以Hanks液為例）(1) 甲液：用約100mL蒸餾水溶解CaCl2，(2) 乙液：用約750mL蒸餾水溶解Na2HPO4·2H2O、KH2PO4、MgSO4·7H2O、葡萄糖、NaCl、KCl。(3) 將甲液徐徐加入乙液中。(4) 將0.35gNaHCO4溶解在100mL蒸餾水中(5) 用數(shù)滴NaHCO4液溶解0.02克酚紅。(6) 將4、5液移入3液中。(7) 用雙蒸水定容至1000mL，充分混勻，調節(jié)PH為7.4。4冰箱過夜。(8) 濾過消毒，小瓶分裝（500mL、250mL×2），冷藏。3、配制要求(1) 配制后液體呈桃紅色，PH7.4左右，沒有

6、混濁和沉淀。(2) 含Ca、Mg的物質要單獨溶解。(3) 用于分離細胞的消化液宜用無Ca、Mg離子的D-Hanks液或PBS液配制。（二）200mmol/l，L-谷氨酰胺（10mL）(II組配)方法：稱取0.292g（M146.12）+雙蒸水10mL濾過除菌-20保存。使用：每100mL培養(yǎng)基加1mL L-谷氨酰胺。（三）抗菌素液（青霉素、鏈霉素）(III組配)1、方法：10mL Hangks液或雙蒸水溶解100萬鏈霉素，再用8mL鏈霉素溶解80萬u的青霉素，成每毫升青霉素、鏈霉素各10萬單位的母液。2、使用：100mL培養(yǎng)液加青、鏈霉素母液0.1mL。（四）RPMI-1640基礎培養(yǎng)液的配制

7、(IV組配)甲液：RPMI-1640 10.4gHepes 2.7g雙蒸水 700mL攪拌至顆粒完全溶解（橙紅色）乙液：NaHCO3 2.2g雙蒸水 30mL30min 顆粒完全溶解將甲、乙兩液混合，加水至終1000mL定容，4冰箱靜止23h，濾過除菌，分裝（250mL、250mL、500mL）無菌試驗，寫好組號，-20保存。注意：用三天內制備的蒸餾水配制，培養(yǎng)基各成分是否完全溶解的判斷方法：將培養(yǎng)液置室溫或4冰箱靜止30min，觀察瓶底有無顆粒產生。（五）5.6 %NaHCO4液（100mL）(V 組配)方法：用雙蒸水100mL配制，濾過除菌，分裝于廣口瓶，4冰箱保存，使用時，NaHCO4液

8、要逐滴加入，并不時攪動培養(yǎng)液，以防PH過高。（六）0.25%胰蛋白酶溶液（400mL）(VI組配)    1：250的胰蛋白酶(Trypsin)粉                 1.0g    D-Hanks               

9、        400mL先用少量D-Hanks溶解胰蛋白酶，再將剩下的液體加入混合，置37水浴中1h左右(待徹底溶解，液體呈透明為止)，用5.6NaHCO4調整pH至7.67.8，用0.22微型濾膜抽濾，分裝置4冰箱中保存。（七）0.02%EDTA（乙二胺四乙酸二鈉）溶液（200mL）(VI組配)方法：稱取EDTA 4g + 200mL D-Hanks液 0.02%，濾過除菌，備用。四、思考題：1、配制后液體呈黃色意味著液體的PH發(fā)生了什么變化？2、用于分離細胞的消化液為什么宜用無Ca、Mg離子的D-Hanks液或PBS液

10、配制3、L-谷氨酰胺在營養(yǎng)液中有何作用？4、營養(yǎng)液制備后為什么要小劑量分裝？實驗四 組織塊原代培養(yǎng)、傳代培養(yǎng)及生物學檢測一、實驗目的掌握組織塊原代培養(yǎng)、傳代培養(yǎng)的基本方法和操作特點及生物學檢測的基本方法和操作要點。二、實驗器材與用品1、肝組織 2、平衡鹽（BSS）液（各組自己配的）×100mL 3、細胞培養(yǎng)皿4、完全培養(yǎng)液 5、滅菌培養(yǎng)皿×1個/人 6、眼科剪、鑷子、吸管等 7、0.4% 臺盼藍 8、血球計數(shù)板和蓋玻片三、實驗步驟（一）組織塊原代培養(yǎng)1、將一小塊肝組織置于滅菌培養(yǎng)皿中，用Hanks或D-Hanks液漂洗表面，吸凈Hanks或D-Hanks，用眼科剪反復剪成1

11、2mm3大?。s需2030min）。2、吸管吸取12mL Hanks或D-Hanks液吹下剪刀中的碎塊，然后，反復吹打，靜置片刻，吸除上清BSS。3、用吸管吸取小塊肝組織于培養(yǎng)瓶底部，均勻，間距離0.5cm為宜，加少量培養(yǎng)液（維持濕潤即可）。4、次日，組織貼壁后，再補加營養(yǎng)液。5、37溫箱培養(yǎng)，2448后觀察。（二）組織塊傳代培養(yǎng)1、將長成單層的原代培養(yǎng)組織塊從二氧化碳培養(yǎng)箱中取出，在超凈工作臺中倒掉瓶內的培養(yǎng)液，加入少許消化液0.25%胰蛋白酶溶液。（以液面蓋住細胞為宜），靜置510分鐘。2、在倒置鏡下觀察被消化的細胞，如果細胞變園，相互之間不再連接成片，這時應立即在超凈工作臺中將消化液倒掉

12、，加入35mL新鮮培養(yǎng)液，吹打，制成細胞懸液。3、將細胞懸液吸出2mL左右，加到另一個培養(yǎng)瓶中并向每個瓶中分別加3mL左右培養(yǎng)液，蓋好瓶塞，送回二氧化碳培養(yǎng)箱中，繼續(xù)進行培養(yǎng)。（三）組織培養(yǎng)細胞的常規(guī)檢查1、營養(yǎng)液PH值的檢查(1) 新鮮的培養(yǎng)液呈橙紅色。(2) 細胞生長旺盛，代謝酸性產物增多，營養(yǎng)液酸性變黃。(3) 培養(yǎng)瓶若刷洗不潔，殘留堿性物質，致營養(yǎng)液PH增高，呈紫紅色。一般情況下，每周換液2次，每次換半量或1/3量。2、微生物的污染與排除（1）細菌污染對培養(yǎng)細胞的影響及污染物的檢測污染的細菌量比較大，增殖的細菌就可以導致培養(yǎng)液外觀渾濁，肉眼就可以判斷。細菌污染大多數(shù)可以改變培養(yǎng)液pH，

13、使培養(yǎng)液變渾濁、變色。用相差顯微鏡觀察，可見滿視野都是點狀的細菌顆粒。原來的清晰培養(yǎng)背景變得模糊，大量的細菌甚至可以覆蓋細胞，對細胞的生存構成威脅。用青霉素、鏈霉素可以預防細菌污染有效。（2）真菌污染對細胞的影響及污染物的檢測大多呈白色或淺黃色小點漂浮于培養(yǎng)液表面，肉眼可見；有的散在生長，鏡下可見呈絲狀、管狀、樹枝狀，縱橫交錯穿行于細胞之間。（3）支原體污染對細胞影響及污染物的檢測支原體污染后，因為它們不會使細胞死亡可以與細胞長期共存，培養(yǎng)基一般不發(fā)生渾濁，細胞無明顯變化，外觀上給人以正常感覺，實則細胞受到多方面潛在影響，如引起細胞變形，影響DNA合成，抑制細胞生長等。四、思考題1、你認為該如

14、何操作才能保證培養(yǎng)過程中無微生物污染？2、你認為組織塊培養(yǎng)成功需哪些條件？3、原代細胞和傳代細胞培養(yǎng)有哪些區(qū)別?實驗五 心肌細胞的原代培養(yǎng)、傳代培養(yǎng)及培養(yǎng)細胞的常規(guī)檢查一、實驗目的掌握心肌細胞培養(yǎng)的基本方法和操作特點，為傳代培養(yǎng)作好準備。二、實驗器材與用品1、鵪鶉的心臟 2、平衡鹽（BSS）液（各組自己配的）×100mL 3、細胞培養(yǎng)瓶（每人一個） 4、完全培養(yǎng)液 5、滅菌培養(yǎng)皿×1個/人 6、眼科剪、鑷子、吸管等 7、0.25%胰蛋白酶液 8、0.02%EDTA液 9、無菌離心管 10、100目銅篩三、實驗內容（一）原代培養(yǎng)實驗步驟1、取材(1) 取一只鵪鶉，斷頸處死，用

15、75%酒精浸泡消毒。(2) （在超凈工作臺中操作）剪開胸壁，取出心臟，放入Hanks或D-Hanks液中。(3) 用Hanks或D-Hanks液沖洗心臟后，剪去心房，取心室肌，然后，用Hanks或D-Hanks液沖洗3次。2、漂洗與剪切(1) 將心室肌置于無菌培養(yǎng)皿中，剪成10塊左右的小塊，用Hanks或D-Hanks清洗2次，吸去多余的液體。(2) 用眼科剪反復剪切成1 mm3左右大小，約需2030min。3、消化(1) 無菌培養(yǎng)皿中的小組織塊用Hanks或D-Hanks液沖洗，移入離心管中（蓋好蓋子，請注意無菌操作），低速離心（500800r/min）×7min。(2) 用吸管去

16、除上清液，加入沉淀量58倍的0.25%胰蛋白酶液，37水浴搖晃20min，用吸管吹打組織塊，以分離細胞，然后，加入完全培養(yǎng)液約5mL，終止消化。4、制備單細胞懸液(1) 將上述懸液500800r/min×7min，吸除上清液。(2) 用BSS液漂吸23min（用吸管反復輕打松散組織），離心去上清液，共兩次。(3) 去上清液后加15mL細胞培養(yǎng)液，混勻計數(shù)約5×105個/mL。5、接種(1) 25mL培養(yǎng)瓶中先加入1.5mL培養(yǎng)液，再接種1mL細胞懸液。(2) 持瓶左右、上下輕輕搖晃，移入37、5%CO2恒溫箱培養(yǎng)，根據(jù)細胞生長情況，每隔23天換液1次。（二）傳代培養(yǎng)實驗步驟

17、1、取原代培養(yǎng)物，吸除原瓶內舊培養(yǎng)液，輕輕搖晃培養(yǎng)瓶，將細胞振入培養(yǎng)液內，將懸浮在培養(yǎng)液中的細胞移入離心管中。2、消化（1）向瓶內加入胰蛋白酶（0.5mL）和EDTA液（0.5mL）約58min，需終止消化（加基礎培養(yǎng)液1mL）。（2）收集消化下來的細胞，歸入前離心管中，500800r/min×5min，去除上清液。3、分瓶培養(yǎng)：沉淀物加少量完全培養(yǎng)液，搖勻，分別接種到兩個新的培養(yǎng)瓶內，每瓶再補加2.0mL培養(yǎng)液，十字形混勻細胞，、5%CO2恒溫箱培養(yǎng)。（三）細胞培養(yǎng)的生物學檢查1、處理貼壁生長細胞時，吸出培養(yǎng)液，每瓶加入消化液各0.5mL，在37下消化12min后，加入約10mL培

18、養(yǎng)液，用吸管沖洗細胞，制成細胞懸液。取0.5mL臺盼藍溶液、0.3 mL Hanks或D-Hanks液和0.2 mL 細胞懸液，充分混勻，然后，將混合液放置515min。2、用吸管吸取少量混合液，注入血細胞計數(shù)板小室。將蓋玻片放在計數(shù)板上，用吸管吸取少量細胞懸液，充滿間隙。在顯微鏡100倍放大用計數(shù)器計數(shù)4個大方格中的細胞。3、至少計數(shù)500個細胞，并計數(shù)其中的著色細胞。用雙蒸水和75%酒精清洗計數(shù)板和蓋玻片，然后，用檫鏡紙檫干。4、結果分析：(1) 細胞密度（個/mL）=（四大格細胞數(shù)4）×104。每個方格的積為1×10-4mL。(2) 細胞總數(shù)（個）= 細胞濃度×細胞懸液量。(3) 正常細胞不被染色。細胞死亡后，細胞膜的通透性增大，臺盼藍進入細胞內，故細胞呈蘭色。(4) 細胞活力（%）=（總細胞數(shù) 著色細胞數(shù)）÷總細胞數(shù)×100%四、思考題：1、你認為心肌細胞培養(yǎng)的基本操作要點是什么？2、培養(yǎng)瓶移入CO2恒溫箱培養(yǎng)時，瓶蓋為何要稍松？3、如何初步判斷胰蛋白酶的消化時間？4、細胞培養(yǎng)到一定時間為何要進行傳代？專心-專注-專業(yè)